МЕТОД ЛАТЕКС-АГГЛЮТИНАЦИИ ДЛЯ ВЫЯВЛЕНИЯ АНТИТЕЛ К ВИРУСУ ИНФЕКЦИОННОГО НЕКРОЗА ГЕМОПОЭТИЧЕСКОЙ ТКАНИ ЛОСОСЕВЫХ РЫБ

Максим Игоревич Доронин; Владимир Александрович Пыльнов; Сергей Сергеевич Рыбаков

Максим Игоревич Доронин
- ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Владимир Александрович Пыльнов
- ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»
Сергей Сергеевич Рыбаков
- ФГБУ «Федеральный центр охраны здоровья животных»

Ключевые слова: вирус инфекционного некроза гемопоэтической ткани, реакция латекс-агглютинации, антитела, аналитическая чувствительность, диагностическая специфичность и чувствительность

Аннотация

Разработаны способы приготовления и контроля латекс-агглютинационных препаратов для выявления антител к вирусу инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб. Определена степень сенсибилизации латексных частиц. Аналитическая чувствительность приготовленных препаратов равна 0,9 мг/мл. При исследовании 40 сывороток крови в реакции агглютинации латекса диагностическая чувствительность и специфичность были равны 90 % и 100 % соответственно. Данный метод простой и быстрый в исполнении, может применяться в качестве скринингового для выявления сывороточных антител, специфичных к вирусу инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых рыб. Подобраны условия получения латексных препаратов, которые позволяют выявлять антитела к вирусу инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых, а также критерии оценки результатов латекс-агглютинационного анализа.

Литература

1. Щелкунов И.С. Эпизоотическая ситуация по вирусным болезням культивируемых рыб // Ветеринария. 2006. № 4. С. 22-25.
2. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Aquatic Animals. Paris, 2014. Vol. 1. P. 300-313.
3. Рудакова С.Л. Некроз гемопоэтической ткани у производителей нерки и предполагаемые источники инфекции // Вопр. рыбол. 2003. Т. 4, № 1 (13). С. 93-102.
4. Jorgensen P.E.V., Olesen N.J., Lorenzen N., Winton J.R., Ristow S.S. Infectious hematopoietic necrosis (IHN) and viral hemorrhagic septicemia (VHS): detection of trout antibodies to the causative viruses by means of plaque neutralization, immunofluorescence, and enzyme-linked immunosorbent assay // J. Aquat. Anim. Health. 1991. Vol. 3. P. 100-108.
5. Molina-Bolivar J.A., Galisteo-Gonzalez F. Latex Immunoagglutination Assays. J. of Macromolecular Science Part C-Polymer Reviews. 2005. Vol. 45. P. 59-98.
6. Serra J., Javier Gella F., Gener J. Latex agglutination procedures in immunodiagnosis. Pure & Appl. Chem. 1991. Vol. 63, N 8. P. 1131-1134.
7. Назаров Н.А., Рыбаков С.С., Метлин А.Е. Латекс-агглютинационный тест для диагностики бешенства животных // Ветеринария. 2013. № 6. С. 56-61.
8. Доронин М.И., Пыльнов В.А., Рыбаков С.С., Назаров Н.А. Метод латекс-агглютинации для выявления антигенов вируса инфекционного некроза гемопоэтической ткани лососевых // Ветеринария. 2014. № 9. С. 56-61.
9. Gaudin Y., Ruigrok R.W., Brunner J. Low-pH induced conformational changes in viral fusion proteins: implications for the fusion mechanism // J. Gen. Virol. 1995. Vol. 76. P. 1541-1556.
10. Сошникова Л.А., Тамашевич В.Н. Многомерный статистический анализ. М.: Юнита-Дана, 1999. С. 350.