ВЛИЯНИЕ ЦИТОКИНИНА НА ПОБЕГООБРАЗОВАНИЕ КЛЕМАТИСА В УСЛОВИЯХ

Наталия Николаевна Иванова; Ирина Вячеславовна Митрофанова; Наталья Васильевна Зубкова

Наталия Николаевна Иванова
- ФГБУН «Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический cад - Национальный научный центр РАН»
Ирина Вячеславовна Митрофанова
- ФГБУН «Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический cад - Национальный научный центр РАН»
Наталья Васильевна Зубкова
- ФГБУН «Ордена Трудового Красного Знамени Никитский ботанический cад - Национальный научный центр РАН»

Ключевые слова: Clematis L, культура in vitro, эксплант, адвентивные микропобеги

Аннотация

Представлены результаты исследования влияния цитокининов: 6-бензиламинопурина (БАП), тидиазурона (ТДЗ) и кинетина в питательной среде на адвентивное побегообразование клематиса в культуре in vitro . В исследования были включены сорта клематиса Альпинист, Никитский Розовый, Бал Цветов, Crystal Fountain и Madame Julia Correvon, произрастающие в коллекционных насаждениях НБС-ННЦ . В качестве эксплантов использовали верхушки и сегменты микропобегов, культивируемых в условиях in vitro , длиной 1 см с узлом. Экспланты помещали на базовую среду МС, дополненную регуляторами роста: БАП (2,20; 4,40 и 8,90 мкМ), ТДЗ (3,0; 6,0 и 9,0 мкМ) и кинетином (4,60; 11,62 и 23,20 мкМ). В качестве контроля использовали среду МС без цитокинина. Колбы и пробирки с эксплантами содержали в культуральной комнате с регулируемыми условиями: 16-часовым фотопериодом, интенсивностью освещения 37,5 мкм м с и температурой 24±1 °С. Выявлены особенности развития сегментов побега изучаемых сортов клематиса на этапе собственно микроразмножения в условия in vitro в зависимости от типа и концентрации цитокинина. Установлено, что максимальное число адвентивных микропобегов без морфологических отклонений формировалось на средах, дополненных БАП и ТДЗ. В присутствии кинетина часть микропобегов имела ряд морфологических изменений. Полученные побеги были непригодны для дальнейшего микроразмножения. Высоким морфогенетическим потенциалом в культуре in vitro обладали экспланты сортов Альпинист и Crystal Fountain.

Литература

1. Clematis on the Web [Электронный ресурс] Режим доступа. URL: http://www.clematis.hull.ac.uk/.
2. Зубкова Н.В. Перспективный сортимент Clematis L. для использования в селекции // Тр. Кубанского гос. аграрного ун-та. 2015. №4 (55). С. 78-80.
3. Зубкова Н.В. Коллекция рода Clematis L. (Ranuncukaceae Juss.) в Никитском ботаническом саду-Национальном научном центре // Цветоводство: история, теория, практика: Материалы VII междунар. науч. конф. Минск, 2016. С. 122-123.
4. Бескаравайная М.А. Клематисы. М.: Росагропромиздат, 1991. 189 с.
5. Mitrofanova I.V., Mitrofanova О.V., Lesnikova-Sedoshenko N.P., Chelombit S.V., Shishkina E.L., Chirkov S.N. Phytosanitary status of Ficus carica collection orchards in Nikita Botanica Gardens and biotechnology of fig plants regeneration // Acta Hortic. 2016. Vol. 139. Р. 303-309.
6. Kreen S., Svensson M., Rumpunen K. Rooting of clematis microshoots and stem cuttings in different substrates // Scientia Hort. 2002. Vol. 96. Р. 351-357.
7. Митрофанова О.В., Митрофанова И.В., Лесникова-Седошенко Н.П., Иванова Н.Н. Применение биотехнологических методов оздоровления растений и размножение безвирусного посадочного материала перспективных цветочно-декоративных культур // Методология биотехнологических и вирусологических исследований ценных многолетних культур: Сб. науч. тр. Гос. Никит. бот. сада. 2014. Т. 138. С. 5-56.
8. Митрофанова И.В. Соматический эмбриогенез и органогенез как основа биотехнологии получения и сохранения многолетних садовых культур. Киев: Аграрна наука, 2011. 344 с.
9. Zhang Q.X., Hu H.K., Wang A.X., Fang Y.M. Somatic embryogenesis and plant regenerationof clematis ‘Multi-Blue’ // Propagation of Ornamental Plants. 2011. Vol. 11, N 1. P. 21-27.
10. Raja Naika H., Krishna V. Plant regeneration from callus culture of Clematis gouriana Roxb. - A rare medicinal plant // Turkish J. Biology. 2008. Vol. 32(2). Р. 99-103.
11. Митрофанова И., Зубкова Н., Митрофанова О., Коротков О., Корзина Н., Иванова Н. Клематисы: современные методы биотехнологии для размножения и сохранения видов и сортов // Цветоводство. 2015. № 3. С. 16-19.
12. Иванова Н.Н., Митрофанова И.В., Митрофанова О.В. Методические основы клонального микроразмножения некоторых декоративных культур // Методология биотехнологических и вирусологических исследований ценных многолетних культур: Сб. науч. тр. Гос. Никит. бот. сада. 2014. Т. 138. С. 57-101.
13. Корзина Н.В., Митрофанова И.В. Развитие эксплантов клематиса (Clematis L.) на этапе введения в условия in vitro // Вiсник Львiвського унiверситету. Серiя біологічна. 2014. № 64. С.67-74.
14. Mitrofanova I., Brailko V., Lesnikova-Sedoshenko N., Mitrofanova O. Clonal micropropagation and some Physiology aspects of essential Roses valuable cultivars regeneration in vitro // Agriculture & Forestry. 2016. Vol. 62. Р. 73-81.
15. Nobre J., Santos C., Romano A. Micropropagation of the Mediterranean species Viburnumtinus // Plant Cell Tiss. Org. Cult. 2000. Vol. 60. Р. 75-78.
16. Mitrofanova I., Lesnikova-Sedoshenko N., Rabotyagov V., Mitrofanova О. Plant regeneration of some cultivars in Lavandula angustifolia Mill. // On in vitro Culture fnd Horticultural Breeding: Abstracts Book of the IX Intl. Symp. (13-17 March, 2016, Gisa, Efypt). 2016. P. 29-30.
17. Nesterowicz S., Kulpa D., Moder K., Kurek J. Micropropagation of an old specimen of common lilac (Syringa vulgaris L.) from the dendrological garden at Przelewice // Acta Sci.Pol. Hortorum Cultus. 2006. Vol.5, N 1. Р. 27-35.
18. Sansberro P., Rey H., Mroginski L. In vitro plantlet regeneration of Schinopsis balansae (Anacardiaceae) // Trees. 2003. Vol. 17. Р. 542-546.
19. Иванова Н.Н., Хохлов С.Ю., Митрофанова И.В. Различные пути регенерации растений Diospyros kaki Thunb. сорта Золотистая в условиях in vitro // Бюл. ГНБС. 2016. Вып. 120. С.24-30.
20. Mitrofanova I.V., Tevfik A.Sh., Mitrofanova О.V., Brailko V.A., Lesnikova-Sedoshenko N.P. Features of canna regeneration in vitro and plantlets adaptation in vivo // Acta Horticulturae. 2017. Vol. 1155. P. 447-454.
21. Parzymies M., Dabski M. The effect of cytokinin types and their concentration on in vitro multiplication of Clematis viticella (L.) and Clematis integrifolia Petit Faucon // Acta Sci. Pol., Hortorum Cultus. 2012. Vol. 11, N. 1. P. 81-91.
22. Kim M-S., Klopfenstein N.B., Cregg B.M. In vitro and ex vitro rooting of micropropagated shoots using three green ash (Fraxinus pennsylvanica) clones // New Forests. 1998. Vol.16. Р. 43-57.
23. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе: учеб. пособие. М.: ФГК-ПРЕСС, 1999. 160 с.
24. Kyte L., Kleyn J., Scoggins H., Bridgen M. Plants from Test Tubes: An introduction of Micropropagation, 4th edn Portland, OR, US:Timber Press. 2013. 274 p.
25. Murashige T., Skoog F. А revised medium for rapid growth and bioassays with Tobacco tissue cultures // Physiol. Plant. 1962. Vol.15, N 3. P. 473-497.
26. Huang L.C., Huang B.L., Murashige T.A. Micropropagation protocol for Cinnamomum camphora. In Vitro Cell Dev. Biol. Plant. 1998. Vol. 34. Р. 141-146.